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      干細胞因子應用

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      干細胞因子應用

      自1990年美國3個研究組幾乎同時報道干細胞因子以來,世界各地進行了廣泛深入的研究。現將干細胞因子(SCF)的研究現狀作一綜述。

      1SCF的結構和理化性質

      干細胞因子又稱肥大細胞生長因子(MGF),Kit配體(KL)及Steel因子(SLF)。它是由骨髓微環境中的基質細胞產生的一種酸性糖蛋白。其糖基連在肽鍵的N和O基團上,相對分子質量31000~36000,由非共價結合的兩個相同亞基組成。等電點PI=3.8。SCF共有273個氨基酸。從-25~-1為信號肽,+1~+189為膜外功能區,+190~+216為跨膜區,+217~+248為胞漿功能區。鼠與人的SCF有83%的同源性[1]。

      SCF在小鼠由10號染色體Steel位點編碼。在人位于12q22~24。SCF有2種存在形式:可溶性和膜結合型。在人,編碼248個氨基酸的mRNA(SCF248),其第6個外顯子中有一蛋白切割位點。由此mRNA表達165個氨基酸的可溶性SCF。編碼220個氨基酸的mRNA(SCF220),其第6個外顯子中無蛋白切割位點。由此mRNA表達膜結合型SCF。在鼠,可溶性SCF可由SCF248在第6外顯子切割或SCF248和SCF220的第7外顯子切割而成。膜結合型SCF由SCF220表達。2種形式SCF均有生物學活性[2]。鼠和人SCF對人造血細胞幾乎有相等的生物學活性,但對鼠細胞,鼠SCF比人SCF生物效應強800倍[3]。

      2SCF的生物學活性

      基因重組SCF和天然SCF有著相同生物學活性。2種形式SCF對造血都起重要作用。但Dolci等[4]發現結合型SCF比可溶性SCF支持造血長幾個星期,對原始胚細胞存活刺激作用以結合型SCF為強。可溶性SCF激活c-kit受體短暫,誘導細胞表面c-kit受體下調更迅速。

      SCF和其他細胞因子一起誘導干和祖細胞增生、延長其存活期及引起干和祖細胞動員。雖然SCF的受體在祖細胞無顯著不同,但SCF誘導紅系祖細胞增生比粒-單祖細胞強,可能是其他特異性因素影響祖細胞對SCF的反應性[5]。給小鼠應用SCF和粒細胞集落刺激因子(G-CSF),外周血干細胞和祖細胞第1天即達高峰,6周后正常。骨髓中干和祖細胞第1天下降,第14天升高達10倍,6周后正常。表明最初外周血干和祖細胞升高是由骨髓中動員到外周血[6]。Mauch等[7]報道SCF和IL-11合用增加長期骨髓增殖細胞(LTMRC)從骨髓動員到未切脾鼠的脾和切脾鼠的血液。Yonemura等[8]認為SCF單獨在體外不能維持干細胞數量,體內作用是SCF和其他細胞因子相互作用的結果。

      在體外SCF和IL-7協同促進前體B細胞增生。Takeda等[9]認為體內B細胞發育不是受體c-kit和SCF相互作用,而另一受體型酪氨酸激酶(FLK2)對B細胞發育比c-kit更重要。

      SCF在肥大細胞發育和存活中起關鍵作用。小鼠SCF的基因缺失導致結締組織和粘膜表面肥大細胞缺乏。由于SCF引起肥大細胞脫粒,應用時一般以減少劑量為代價。Nocka等[10]發現二硫化物相聯系的二聚體SCF比普通SCF刺激細胞增生強10~20倍。但對肥大細胞脫粒并不比普通SCF強。

      SCF既有化學激動性,也有化學趨化性。膜結合型SCF促進造血祖細胞回到骨髓。靜脈輸注kit+造血祖細胞后其沿著SCF的梯度移動到骨髓。這是由kit粘附到骨髓基質細胞表面的SCF引起[11]。Kim等[12]認為基質細胞源因子-1(SDF-1)只有化學趨化性,它作為生理抗移動因子抑制造血祖細胞移出骨髓。

      應用SCF、促血小板生長因子(TPO)、IL-12、IL-3處理冷凍骨髓細胞移植給鼠,其恢復血小板和中性粒細胞比用未處理的骨髓移植早3~6d[13]。在鼠模型中,受者在應用5-FU前和后給予SCF注射,可以使干細胞從靜止期進入細胞周期。這樣干細胞對5-FU敏感,易于殺死,為供者骨髓移入受者提供了穩定的內環境,有利于骨髓移植的成功[14]。

      將蟲熒光素酶基因連在質粒上,該基因以聚賴氨酸(PL)與抗生蛋白鏈菌素(SA)共價連接,生物素酰基化的SCF以生物素與SA連接,腺病毒與PL共價連接,用此載體轉染人MBO2和MO-7e細胞(兩者均表達c-kit),孵育2h通過SCF與c-kit結合轉染效率可達90%[15]。但Fielding等[16]報道逆轉錄病毒載體通過連接SCF使SCF與造血細胞表面c-kit粘附,則病毒不能轉染造血細胞,對不表達c-kit的非造血細胞卻能轉染。

      3臨床應用

      曾經將血清SCF低下作為引起造血功能障礙的原因。據報道在再障、骨髓增生異常綜合征,骨髓移植后患者血清SCF水平低下。Abkowitz等[17]檢測了34例純紅系再障患者血清SCF與正常人比較,無顯著統計學意義。認為血清SCF水平可能與臨床無相關性。但血清SCF是可溶性SCF,至于膜結合型SCF尚無法檢測。

      Weaver等[18]將48例上皮卵巢癌患者第1天給予3g·(m2)-1環磷酰胺輸注,4h輸完,美司鈉6g·(m2)-1輸注12h。然后48例隨機分成4組,每人均注射5μg·kg·d-1G-CSF,每組中有9例加用重組人的SCF。按組別分別給予5μg·kg-1.d-1、10μg·kg-1.d-1、15μg·kg-1.d-1、20μg·kg-1.d-1。化療后48h開始應用,直到外周血WBC≥4.0×109L-1。這時進行外周血單成分采集。結果發現長期培養起始細胞(LTC-IC)在SCF20μg·kg-1.d-1組比單用G-CSF組增加5.8倍,CD34+細胞增加3倍,CD34+CD33-細胞增加64倍。Glaspy等[19]將215例高危期乳癌患者化療后隨機分組,單用G-CSF10mg·kg-1.d-1達7d,G-CSF10μg·kg-1.d-1和重組人SCF5、10、15、20、25、30μg·kg-1.d-1聯合用藥達7、10、13d。每種療法的最后3d進行外周血白細胞單成分采集,結果發現應用20μg·kg-1.d-1SCF和10μg·kg-1.d-1G-CSF后,第5天開始進行外周血單采是動員外周血祖細胞的最適劑量和最佳方案。Begley等[20]將62例早期乳癌患者化療前隨機分組接受12μg·kg-1.d-1G-CSF和同劑量G-CSF加rhSCF5、10、15μg·kg-1.d-1達7d,以及用10d10μg·kg-1.d-1SCF且第4天加用G-CSF達7d。結果發現先用SCF3d作預治療,再用二者聯合治療組,外周血造血祖細胞升高更加明顯。SCF一般為皮下注射。最普遍的副反應是注射局部皮膚有輕度水腫,外有一圈紅腫。一般在注射后4h開始,持續24~48h,以后恢復正常。偶有過敏反應報道,應用前可給予抗過敏預防[19]。

      雖然干細胞因子的研究已經深入,但仍有尚未解決的問題。(1)SCF和其受體c-kit相互作用觸發細胞內變化的具體機制有待繼續闡明;(2)SCF的基礎研究較多,臨床應用不夠廣泛,對再障治療效果尚不確定;(3)SCF在體外能引導載體轉染,體內尚缺乏證據。

      參考文獻

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      2HuangEJ,NockaKH,BuckJ,etal.Differentialexpressionandprocessingoftwocellassociatedformsofthekitligand:KL-1andKL-2.MolBiolCell,1992,3:349

      3MartinFH,SuggsSV,LangleyKE,etal.PrimarystructureandfunctionalexpressionofratandhumanstemcellfactorDNAs.Cell,1990,63(1):203

      4DolciS,WilliamsDE,ErnstMK,etal.Requirementformastcellgrowthfactorforprimordialgermcellsurvivalinculture.Nature,1991,352(6338):809

      5OlweusJ,TerstapenLWMM,ThompsonPA,etal.Expressionandfunctionofreceptorsforstemcellfactoranderythropoietinduringlineagecommitmentofhumanhematopoieticprogenitorcells.Blood,1996(5),88:1594

      6BodineDM,SeidelNE,OrlicD.Bonemarrowcollected14daysafterinvivoadministrationofgranulocytecolonystimulatingfactortomicehas10foldmorerepopulatingabilitythanuntreatedbonemarrows.Blood,1996,88(1):89

      7MauchP,LamontC,NebenTY,etal.Hematopoiteticstemcellsinthebloodafterstemcellfactorandinterleukin-11administration:evidencefordifferentmachanismsofmobilization.Blood,1995,86(12):4674

      8YonemuraY,KuH,LymanSD,etal.Invitroexpansionofhematopoiticprogenitorsandmaintenanceofstemcells:comparisonbetweenflt3/flt2ligandandkitligand.Blood,1997,89(6):1915

      9TakedaS,ShimizuT,RodewaldHR.Interactionbetweenc-kitandstemcellfactorarenotrequiredforBcelldevelopmentinvitro.Blood,1997,89(2):518

      10NockaKH,LevineBA,KoJL,etal.Increasedgrowthpromotingbutnotmastcelldegranulationpotentialofacovalentdimerofc-kitligand.Blood,1997,90(10):3874

      11OkumuraN,TsujiK,EbiharaY,etal.Chemotacticandchemokineticactivitiesofstemcellfactoronmurinehematopoieticprogenitorcells.Blood,1996,87(10):4100

      12KimCH,BroxmeyerHE.Invitrobehaviorofhematopoieticprogenitorcellsundertheinflunceofchemoattractants:stromalcellderivedfactor-1,steelfactor,andthebonemarrowenvironment.Blood,1998,91(1):100

      13RatajczakMZ,RatajczakJ,MachalinskiB,etal.Invitroandinvivoevidencethatexvivocytokineprimingofdonormarrowcellsmayameliorateposttransplantthrombocytepenia.Blood,1998,91(1):353

      14VanosR,DawesD,MislowJMK,etal.Hostconditioningwith5-fluorouracilandkit-ligandtoprovideforlongtermbonemarrowengraftment.Blood,1997,89(7):2376

      15SchwarzenbergerP,SpenceSE,GooyaJM,etal.Targetedgenetransfertohumanhematopoieticprogenitorcelllinesthroughthec-kitreceptor.Blood,1996,87(2):472

      16FieldingAK,MauriceM,MorlingFJ,etal.Inversetargetingofretroviralvectors:selectivegenetransferinamixedpopulationofhematopoieticandnonhematopoieticcells.Blood,1998,91(5):1802

      17AbkowitzJL,HumeH,YancikSA,etal.Stemcellfactorserumlevelsmaynotbeclinicallyrelevant[letter].Blood,1996,87(9):4017

      18WeaverA,RyderD,CrowtherD,etal.Increasednumbersoflong-termculture-initiatingcellsintheapheresisproductofpatientsrandomizedtoreceiveincreasingdosesofstemcellfactoradministeredincombinationwithchemotherapyandastandarddoseofgranulocytecolony-stimulatingfactor.Blood,1996,88(9):3323

      19GlaspyJA,ShpallEJ,LemaistreCF,etal.Peripheralbloodprogenitorcellmobilizationusingstemcellfactorincombinationwithfilgrastiminbreastcancerpatients.Blood,1997,90(8):2939

      20BegleyCG,BasserR,MansfieldR,etal.Enhancedlevelsandenhancedclonogeniccapacityofbloodprogenitorcellsfollowingadministrationofstemcellfactorplusgranulocytecolony stimulatingfactortohumans.Blood,1997,90(9):3378

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