醫(yī)學(xué)畢業(yè)基因芯片技術(shù)進(jìn)展及應(yīng)用

前言：本站為你精心整理了醫(yī)學(xué)畢業(yè)基因芯片技術(shù)進(jìn)展及應(yīng)用范文，希望能為你的創(chuàng)作提供參考價值，我們的客服老師可以幫助你提供個性化的參考范文，歡迎咨詢。

醫(yī)學(xué)畢業(yè)論文

[關(guān)鍵詞]基因芯片；核酸探針序列；雜交

1基因芯片概述

隨著人類基因組計(jì)劃(HumanGenomeProject)即全部核苷酸測序的即將完成

，人類基因組研究的重心逐漸進(jìn)入后基因組時代（PostgenomeEra）向基因的功

能及基因的多樣性傾斜［1，2］。通過對個體在不同生長發(fā)育階段或不同生理狀態(tài)

下大量基因表達(dá)的平行分析，研究相應(yīng)基因在生物體內(nèi)的功能，闡明不同層次多基

因協(xié)同作用的機(jī)理，進(jìn)而在人類重大疾病如癌癥、心血管疾病的發(fā)病機(jī)理、診斷治

療、藥物開發(fā)等方面的研究發(fā)揮巨大的作用。它將大大推動人類結(jié)構(gòu)基因組及功能

基因組的各項(xiàng)基因組研究計(jì)劃。

基因芯片的工作原理與經(jīng)典的核酸分子雜交方法（southern、northern）是

一致的，都是應(yīng)用已知核酸序列作為探針與互補(bǔ)的靶核苷酸序列雜交，通過隨后的

信號檢測進(jìn)行定性與定量分析，基因芯片在一微小的基片（硅片、玻片、塑料片等

）表面集成了大量的分子識別探針，能夠在同一時間內(nèi)平行分析大量的基因，進(jìn)行

大信息量的篩選與檢測分析［3，4］。基因芯片主要技術(shù)流程包括：芯片的設(shè)計(jì)與

制備；靶基因的標(biāo)記；芯片雜交與雜交信號檢測。

基因芯片的設(shè)計(jì)實(shí)際上是指芯片上核酸探針序列的選擇以及排布，設(shè)計(jì)方法取

決于其應(yīng)用目的，目前的應(yīng)用范圍主要包括基因表達(dá)和轉(zhuǎn)錄圖譜分析及靶序列中單

堿基多態(tài)位點(diǎn)（singlenucleotidepolymorphism，SNP）或突變點(diǎn)的檢測，表達(dá)

型芯片的目的是在雜交實(shí)驗(yàn)中對多個不同狀態(tài)樣品(不同組織或不同發(fā)育階段、不

同藥物刺激)中數(shù)千基因的表達(dá)差異進(jìn)行定量檢測，探針序列一般來自于已知基因

的cDNA或EST庫，設(shè)計(jì)時序列的特異性應(yīng)放在首要位置，以保證與待測目的基因的

特異結(jié)合，對于同一目的基因可設(shè)計(jì)多個序列不相重復(fù)的探針，使最終的數(shù)據(jù)更為

可靠。基因單堿基多態(tài)檢測的芯片一般采用等長移位設(shè)計(jì)法［5］，即按靶序列從

頭到尾依次取一定長度的互補(bǔ)的核苷酸序列形成一探針組合，這組探針是與靶序列

完全匹配的野生型探針，然后對于每一野生型探針，將其中間位置的某一堿基分別

用其它三種堿基替換，形成三種不同的單堿基變化的核苷酸探針，這種設(shè)計(jì)可以對

某一段核酸序列所有可能的SNPs位點(diǎn)進(jìn)行掃描。

芯片制備方法主要包括兩種類型：(1)點(diǎn)樣法：首先是探針庫的制備,根據(jù)基

因芯片的分析目標(biāo)從相關(guān)的基因數(shù)據(jù)庫中選取特異的序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增或直接人工

合成寡核苷酸序列［6］，然后通過計(jì)算機(jī)控制的三坐標(biāo)工作平臺用特殊的針頭和

微噴頭分別把不同的探針溶液逐點(diǎn)分配在玻璃、尼龍以及其它固相基片表面的不同

位點(diǎn)上，通過物理和化學(xué)的方法使之固定，該方法各技術(shù)環(huán)節(jié)均較成熟，且靈活性

大，適合于研究單位根據(jù)需要自行制備點(diǎn)陣規(guī)模適中的基因芯片。(2)原位合成法

［7～10］：該法是在玻璃等硬質(zhì)表面上直接合成寡核苷酸探針陣列，目前應(yīng)用的

主要有光去保護(hù)并行合成法，壓電打印合成法等，其關(guān)鍵是高空間分辨率的模板定

位技術(shù)和高合成產(chǎn)率的DNA化學(xué)合成技術(shù)，適合制作大規(guī)模DNA探針芯片，實(shí)現(xiàn)高密

度芯片的標(biāo)準(zhǔn)化和規(guī)模化生產(chǎn)。

待分析樣品的制備是基因芯片實(shí)驗(yàn)流程的一個重要環(huán)節(jié),靶基因在與芯片探針

結(jié)合雜交之前必需進(jìn)行分離、擴(kuò)增及標(biāo)記。標(biāo)記方法根據(jù)樣品來源、芯片類型和研

究目的的不同而有所差異。通常是在待測樣品的PCR擴(kuò)增、逆轉(zhuǎn)錄或體外轉(zhuǎn)錄過程

中實(shí)現(xiàn)對靶基因的標(biāo)記。對于檢測細(xì)胞內(nèi)mRNA表達(dá)水平的芯片，一般需要從細(xì)胞和

組織中提取RNA，進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，并加入偶聯(lián)有標(biāo)記物的dNTP，從而完成對靶基因的

標(biāo)記過程［11］，對于陣列密度較小的芯片可以用同位素，所需儀器均為實(shí)驗(yàn)室常

規(guī)使用設(shè)備，易于開展相關(guān)工作，但是在信號檢測時，一些雜交信號強(qiáng)的點(diǎn)陣容易

產(chǎn)生光暈，干擾周圍信號的分析。高密度芯片的分析一般采用熒光素標(biāo)記靶基因，

通過適當(dāng)內(nèi)參的設(shè)置及對熒光信號強(qiáng)度的標(biāo)化可對細(xì)胞內(nèi)mRNA的表達(dá)進(jìn)行定量檢測

。近年來運(yùn)用的多色熒光標(biāo)記技術(shù)可更直觀地比較不同來源樣品的基因表達(dá)差異，

即把不同來源的靶基因用不同激發(fā)波長的熒光素標(biāo)記，并使它們同時與基因芯片雜

交，通過比較芯片上不同波長熒光的分布圖獲得不同樣品間差異表達(dá)基因的圖譜［

12，13］，常用的雙色熒光試劑有Cy3-dNTP和Cy5-dNTP。對多態(tài)性和突變檢測型

基因芯片采用多色熒光技術(shù)可以大大提高芯片的準(zhǔn)確性和檢測范圍，例如用不同的

熒光素分別標(biāo)記靶序列及單堿基失配的參考序列，使它們同時與芯片雜交，通過不

同熒光強(qiáng)弱的比較得出靶序列中堿基失配的信息［14］。

基因芯片與靶基因的雜交過程與一般的分子雜交過程基本相同，雜交反應(yīng)的條

件要根據(jù)探針的長度、GC堿基含量及芯片的類型來優(yōu)化，如用于基因表達(dá)檢測，雜

交的嚴(yán)格性較低，而用于突變檢測的芯片的雜交溫度高，雜交時間短，條件相對嚴(yán)

格。如果是用同位素標(biāo)記靶基因，其后的信號檢測即是放射自顯影，若用熒光標(biāo)記

，則需要一套熒光掃描及分析系統(tǒng)，對相應(yīng)探針陣列上的熒光強(qiáng)度進(jìn)行分析比較，

從而得到待測樣品的相應(yīng)信息。由于基因芯片獲取的信息量大，對于基因芯片雜交

數(shù)據(jù)的分析、處理、查詢、比較等需要一個標(biāo)準(zhǔn)的數(shù)據(jù)格式，目前，一個大型的基

因芯片的數(shù)據(jù)庫正在構(gòu)建中，將各實(shí)驗(yàn)室獲得的基因芯片的結(jié)果集中起來，以利于

數(shù)據(jù)的交流及結(jié)果的評估與分析。

2基因芯片的應(yīng)用

基因表達(dá)圖譜的繪制是目前基因芯片應(yīng)用最廣泛的領(lǐng)域，也是人類基因組工程

的重要組成部分，它提供了從整體上分析細(xì)胞表達(dá)狀況的信息，而且為了解與某些

特殊生命現(xiàn)象相關(guān)的基因表達(dá)提供了有力的工具，對于基因調(diào)控以及基因相互作用

機(jī)理的探討有重要作用［15～19］。人類基因組編碼大約100000個不同的基因，因

此，具有監(jiān)測大量mRNA的實(shí)驗(yàn)工具很重要。基因芯片技術(shù)可清楚地直接快速地檢測

出以1∶300000水平出現(xiàn)的mRNA，且易于同時監(jiān)測成千上萬的基因［16］。目前，

已能夠在1.6cm2面積上合成和閱讀含400000個探針的陣列，可監(jiān)測10000個基因的

表達(dá)狀況。斯坦福大學(xué)的Brown用制備的酵母cDNA芯片，獲得酵母在不同細(xì)胞周期

狀態(tài)以及在熱休克冷休克處理后其2473個基因的表達(dá)圖譜［19］，較直觀地反應(yīng)了

不同條件和狀態(tài)下基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控水平，從而為尋找基因調(diào)控的機(jī)理提供了一條有效

的途徑。

定量監(jiān)測大量基因表達(dá)水平在闡述基因功能、探索疾病原因及機(jī)理、發(fā)現(xiàn)可能

的診斷及治療的靶基因等方面具有重要價值的。Derisi等選用來自惡性腫瘤細(xì)胞系

UACC903中的1161個cDNA克隆制成芯片，通過比較正常和腫瘤細(xì)胞的表達(dá)差異，發(fā)

現(xiàn)在惡性腫瘤細(xì)胞中P21基因處于失活或關(guān)閉狀態(tài)，但在逆轉(zhuǎn)的細(xì)胞系中呈高表達(dá)

［17］。Golub等應(yīng)用cDNA芯片檢測基因表達(dá)的差異進(jìn)行癌癥的分類，成功地區(qū)分

出急性髓細(xì)胞性白血病（AML）和急性淋巴細(xì)胞性白血病（ALL），預(yù)期這種方法還

能診斷出新的白血病種類［20］。在炎癥性疾病類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(RA)和炎癥性腸病

(IBD)的基因表達(dá)研究中，可檢測出炎癥疾病誘導(dǎo)的基因如TNF-α、IL或粒細(xì)胞集

落刺激因子，同時發(fā)現(xiàn)一些以前未發(fā)現(xiàn)的基因如HME基因和黑色素瘤生長刺激因子

［11，21］。目前，大量涌現(xiàn)的人類ESTs給cDNA微陣列提供了豐富的序列資源，數(shù)

據(jù)庫中ESTs代表了人類基因，因此ESTs微陣列可在缺乏其它序列信息的條件下用于

基因發(fā)現(xiàn)和基因表達(dá)檢測，從而加快人類基因組功能分析的進(jìn)程。

基因芯片的另一重要應(yīng)用是基因多態(tài)位點(diǎn)及基因突變的檢測，現(xiàn)有大量實(shí)例說

明，基因組多樣性的研究對闡明不同人群和個體在疾病的易感性和抵抗性方面表現(xiàn)

出的差異具有重要意義，一旦對基因組的編碼序列進(jìn)行系統(tǒng)篩查，就有可能找出與

疾病易感性有關(guān)的大量基因變異［2］。基因芯片技術(shù)可大規(guī)模地檢測和分析DNA的

變異及多態(tài)性。Wang等應(yīng)用高密度基因芯片對2.3Mb人類基因的SNP進(jìn)行篩查，確

定了3241個SNPs位點(diǎn)，顯示出大規(guī)模鑒定人類基因型的可能［22］。Lipshutz等人

采用含18,495個寡核苷酸探針的微陣列，對HIV-1基因組反轉(zhuǎn)錄酶基因(rt)及蛋白

酶基因(pro)的高度多態(tài)性進(jìn)行了篩選，這些變異將導(dǎo)致病毒對多種抗病毒藥物包

括AZT、ddI、ddC等表現(xiàn)出抗性，因此rt與pro的變異與多態(tài)性的檢測具有重要的臨

床意義［23］。隨著大量疾病相關(guān)基因的發(fā)現(xiàn)，變異與多態(tài)性分析將在疾病的診斷

與治療方面體現(xiàn)出越來越重要的價值。Affymetrix公司已將P53基因的全長序列和

已知突變的序列制成探針集成在芯片上，可對與P53基因突變相關(guān)的癌癥進(jìn)行早期

診斷。Hacia等采用含96600個20聚寡核苷酸高密度陣列對遺傳性乳腺和卵巢癌BRC

A1基因3.45kb的第11個外顯子進(jìn)行雜合變異篩選［12］，結(jié)果準(zhǔn)確診斷出15個已知

變異的患者樣品中的14個，而在20個對照樣品中未發(fā)現(xiàn)1例假陽性，表明DNA芯片技

術(shù)在某些疾病相關(guān)基因可能的雜合變異的檢測方面所具有的靈敏度與特異性是令人

滿意的。

芯片技術(shù)中雜交測序技術(shù)（sequencingbyhybridization,SBH）是一種新的

高效快速測序方法，也是基因芯片的另一重要應(yīng)用［24］，其原理與芯片檢測多態(tài)

位點(diǎn)相類似，即通過與一組已知序列的核酸探針雜交進(jìn)行序列測定，用熒光標(biāo)記的

待測序列與基因芯片上對應(yīng)位置的核酸探針產(chǎn)生互補(bǔ)配對時，通過確定熒光強(qiáng)度最

強(qiáng)的探針位置，獲得一組序列互補(bǔ)的探針序列，據(jù)此可重組出靶核酸的序列。用含

65536個8聚寡核苷酸的微陣列，采用SBH技術(shù)，可測定200bp長DNA序列，采用6710

8864個13聚寡核苷酸的微陣列，可對數(shù)千個堿基長的DNA測序。

3結(jié)束語

基因芯片技術(shù)的出現(xiàn)不過短短幾年時間，其發(fā)展勢頭十分迅猛，在生命科學(xué)的

各個領(lǐng)域得到廣泛地應(yīng)用，但其存在的缺陷也是相當(dāng)明顯的。首先是成本的問題，

由于芯片制作的工藝復(fù)雜，信號檢測也需專門的儀器設(shè)備，一般實(shí)驗(yàn)室難以承擔(dān)其

高昂的費(fèi)用，其次在芯片實(shí)驗(yàn)技術(shù)上還有多個環(huán)節(jié)尚待提高，如在探針合成方面，

如何進(jìn)一步提高合成效率及芯片的集成程度是研究的焦點(diǎn)。而樣品制備的簡單化與

標(biāo)準(zhǔn)化則芯片應(yīng)用進(jìn)一步普及的前提。雖然芯片技術(shù)還存在這樣或那樣的問題，但

其在基因表達(dá)譜分析、基因診斷、藥物篩選及序列分析等諸多領(lǐng)域已呈現(xiàn)出廣闊的

應(yīng)用前景，隨著研究的不斷深入和技術(shù)的更加完善基因芯片一定會在生命科學(xué)研究

領(lǐng)域發(fā)揮越來越重要的作用。

［參考文獻(xiàn)］

［1］CheungVG,MorleyM,AguilarFetal.Makingandreadingmicroarra

ys［J］.NatureGenetics(Supplement),1999，21∶15.

［2］張思仲.人類基因組的單核苷酸多態(tài)性及其醫(yī)學(xué)應(yīng)用［J］.中華醫(yī)學(xué)遺傳學(xué)

雜志，1999，16∶119.

［3］MarshallAandHodgsonJ.DNAchips:Anarrayofpossibilities［

J］.NatureBiotechnology，1998，16∶731.

［4］RamsayR.DNAchips:State-of-the-art［J］.NatureBiotechnology，

1998，16∶40.

［5］LipshutzR,FodorS,GingerasT,etal.Highdensitysyntheticol

igonucleotidearrays［J］.NatureGenetics(Supplement)，1999，21∶20.

［6］PrpndnikovD,TimofeevE,MirzabekovA.ImmobilizationofDNAin

PolyacrylamidegelforthemanufractureofDNAchipandoligonucleotide

Microchips［J］，AnalBiochem，1998，259∶34.

［7］McGallGH，BaroneAD，DiggelmannM，etal.Theefficiencyoflig

ht-directedsynthesisofDNAarraysonglasssubstrates［J］.JAmChem

Soc，1997，119(22)∶5081.

［8］PeaseAC,SolasD,SullivanEJ,etal.Light-generatedoligonucl

eotidearraysforrapidDNAsequenceanalysis［J］.ProcNatlAcadSciU

SA,1994，91∶5022.

［9］FodorS，ReadL,PirrungMetal.Light-directed,spatiallyaddres

sableparallelchemicalsynthesis［J］.Science,1991，251∶767.

［10］Beecher，JodyE.，McGall，GlennH.，etal.Chemicallyamplified

photolithographyforthefabricationofhighdensityoligonucleotidea

ssays［J］.PolymMaterSciEng，1997，76∶597.

［11］Schena，M，Shalon，D，Davis，RW，etal.Qantitativemonitoring

ofgeneexpressionpatternswithacomplementaryDNAmicroarray［J］.Sc

ience,1995,270∶467.

［12］HaciaJ,BrodyL,CheeM,etal.Detectionofheterozygousmutatio

nsinBRCA1usinghighdensityoligonucleotidearraysandtwo-colorflu

orescenceAnalysis［J］.NatGenet,1996,14∶441.

［13］HaciaJ，EdgemonK,SunBetal.Twocolorhybridizationanalysi

susinghighdensityoligonucleotidearraysandenergytransferdyes［J

］.NucleicAcidsRes,1998,26∶4249.

［14］HaciaJ.Resequencingandmutationanalysisusingoligonucleotid

esmicroarrays［J］.NatureGenetics(Supplement),1999,21∶42.

［15］WodickaL，DongH，MittmannM,etal.Genome-wideexpressionmoni

toringinSaccharomycescerevisiae［J］.NatureBiotechnology,1997,15∶1

359.

［16］LockhartDJ，DongH，ByrneMC，etal.Expressionmonitoringby

hybridizationtohigh-densityoligonucleotidearrays［J］.NatureBiotec

hnology,1997,14∶1675.

［17］DeRisiJ，PenlandL，BrownPO，etal.UseofacDNAmicroarray

toanalysisgeneexpressionpatternsinhumancancer［J］.NatGenet,199

6,14∶457.

［18］BrownPO,BotsteinD.ExploringthenewworldofgenomewithDN

Amicroarrays［J］.NatureGenetics(Supplement),1999,21∶33.

［19］JelinskySandSamsonL.GlobalresponseofSaccharomycescerevi

siaetoaalkylatingagent,proc［J］.NatlAcadSciUSA,1999，96∶1486.

［20］GolubT,SlonimD,TamayoP,etal,1999,MolecularClassificat

ionofcancer:ClassDiscoveryandPredictionbyGeneExpressionMonito

ring［J］.Science,1999,286∶531.

［21］HellerRA,SchenaM,ChaiA,etal.Discoveryandanalysisofin

flammatorydisease-relatedgenesusingcDNAmicroarrays［J］.ProcNatl

AcadSciUSA,1997,94∶2150.

［22］WangD,FanJ,SiaoCetal.Large-scaleidentification,mapping

andgenotypingofsingle-nucleotidepolymorphisminhumangenome［J］.

Science,1998,280∶1077.

［23］LipshutzRJ,MorrisD,CheeM,etal.Usingoligonucleotidepro

bearraystoaccessgeneticdiversity［J］.BioFeature,1995,19(3)∶442.

［24］WallraffG，LabadieJ，BrockP，etal.DNASequencingonaChip

［J］.Chemtech,1997,22∶32.